Лидеры

В этой статье рассказываются общие правила выращивания не только галлюциногенных псилоцибиновых грибов, но и грибных культур вообще. Статья будет полезна начинающим микологам и гроверам, которым еще не приходилось сталкиваться на практике с выращиванием галлюциногенных грибов в домашних условиях. Подготовка банок для выращивания грибов В нашем случае будут использоваться банки на 720 мл (800 г), из-под огурцов или помидоров. Для культивации псилоцибиновых грибов подойдут любые похожие банки, не обязательно использовать именно такие. Порядок подготовки банок такой: снимаем металлическую крышку и, используя любой предмет округлой формы, очерчиваем на ее поверхности круг диаметром 20…35 мм; используя обычные ножницы, вырезаем в крышке отверстие; теперь необходимо загнуть его края внутрь. Это удобно сделать тупым деревянным предметом, например, скалкой, или ручкой от чего-либо, прилагая усилия в двух направлениях, вниз и вбок. Грибы: изготовление ватно-марлевого тампона Теперь необходимо изготовить ватно-марлевый тампон. Для этого: отрезаем бинт или кусок марли (бинт должен быть довольно широким, 10…12 см; складываем его в два слоя; кладем на бинт кусок ваты (ваты должно быть много, чтобы тампон получился достаточно плотным); поднимаем края бинта и перевязываем их веревкой (если используется нитка, то ее необходимо сложить в несколько слоев); обрезаем излишки бинта и веревки. готовый тампон вставляем в проделанное нами отверстие в крышке банки. Тампон необходимо вставить таким образом, чтобы с обеих сторон крышкион выступал одинаково; теперь надо одновременно и сильно прижать его ладонями сверху и снизу. Все это делается для того, чтобы края тампона заходили дальше краев отверстия, что в свою очередь, предотвратит попадание бактерий через зазор между тампоном и крышкой. Для того, чтобы исключить попадание бактерий, тампон должен быть плотным: чем плотней он будет, тем меньше вероятность проникновения бактерий (но перебарщивать тоже не стоит, иначе воздух не сможет проходить сквозь тампон). Тампон делают примерно в полтора раза большего размера, чем размер отверстия, в которое он будет вставляться. Приготовление зерна к разведению мицелия В нашем случае будет использоваться зерно пшеницы. Помимо пшеницы, для выращивания галлюциногенных грибов Psilocibe Cubensis с успехом можно использовать и другие виды субстрата, например, рожь, пшено, гречку, перловку, рис, овес, корм для птиц, сено, солому и т.д. Вообще спектр используемых субстратов довольно широк и определяется, в первую очередь, личными предпочтениями человека, выращивающего психоактивные грибы. Перепробовав практически все, вышеперечисленные виды субстрата, автор остановил свой выбор все-таки на пшенице. Зерно необходимо предварительно отварить. На каждую используемую банку потребуется 150…170 мл (не грамм!) зерна. Необходимое количество, легко определить, используя для этой цели мерный стаканчик. Зерно насыпаем в кастрюлю или ковшикв том объеме, который потребуется для приготовления необходимого нам количества банок, заливаем водой и ставим вариться на плиту. Варить зерно до готовности нужно примерно 30…40 минут (все зависит от количества). Зерно считается готовым тогда, когда на поверхности появляются отдельные, разваренные зерна, их должно быть немного, примерно 5…7% от общей массы. Вода к этому времени, практически полностью выкипает. После того, как зерно сварилось, его необходимо промыть холодной водой. Cначала вода будет мутно-коричневой, а потом станет совершенно прозрачной. Это делается для того, чтобы зерно не слипалось. Затем воду нужно полностью слить, а зерно разложить по банкам. Если все сделано правильно, зерно будет занимать, примерно 1/2 объема банки. Стерилизация банок с зерном перед выращиванием Теперь банки с зерном необходимо стерилизовать. Для стерилизации лучше использовать скороварку, но также подойдет и обычная кастрюля. Перед стерилизацией на дно кастрюли, необходимо положить кусок тряпки, или использовать какую-нибудь другую “подставку” (например, перевернутую тарелку), для того, чтобы банки не соприкасались с дном кастрюли и не лопнули во время стерилизации. Воду в кастрюлю, следует наливать таким образом, чтобы она закрывала нижнюю часть банок, и чтобы она не выкипела за то время, пока банки будут стерилизоваться. Оптимальное время стерилизации - один час. Банки лучше не вынимать из скороварки или кастрюли до тех пор, пока они полностью не остынут. Если банки вынуть сразу же после стерилизации из-за разницы давления они начнут затягивать в себя холодный воздух, а это может привести к тому, что вместе с воздухом, внутрь банки попадут микроорганизмы, которые в дальнейшем могут вызвать заражение субстрата. После стерилизации банки с субстратом должны остыть до комнатной температуры (инокуляцию лучше проводить спустя сутки - это гарантированный срок после окончания стерилизации). После стерилизации зерно еще немного увеличилось в размере и теперь занимает примерно 2/3 от объема банки. Нигде в банке, не должно присутствовать никакой свободной воды, а зерно должно выглядеть сухим и при постукивании кулаком по банке легко рассыпаться на отдельные зерна. Если все так – значит, все было сделано правильно. Инокуляция готовым шприцом со споровой взвесью Если вы используете уже готовый шприц со споровой взвесью, то процесс инокуляции не должен вызвать особых проблем. Благодаря тому, что субстрат и споровая взвесь остаются в герметично закрытых емкостях, для проведения инокуляции не требуется предварительная стерилизация помещения, в котором вы будете проводить работы. Так же можно обойтись без применения резиновых перчаток и марлевой повязки на лицо (хотя конечно, все эти меры предосторожности существенно снижают риск заражения субстрата). Берем банку и обильно смачиваем тампон спиртом, но так, чтобы спирт не начал капать на зерно. После этого берем приготовленный шприц со споровой взвесью и прокаливаем иглу над пламенем горелки. Иглу необходимо прокалить докрасна. Затем опускаем иглу в банку со спиртом, (это делается для того, чтобы остудить иглу и не прожечь ей тампон), сразу же прокалываем смоченный спиртом тампон и впрыскиваем некоторое количество споровой взвеси в банку с зерном. Для инокуляции одной банки достаточно 2…4 мл споровой взвеси. Следите за тем, чтобы игла прошла тампон насквозь, и ее кончик показался внутри банки. Если этого не произойдет, то все споры окажутся в тампоне. Если по каким-либо причинам тампон проколоть не удается, инокуляцию можно провести, аккуратно приоткрыв крышку банки (перед инокуляцией банку необходимо протереть спиртом). Инокуляция субстрата куском агара с мицелием Для проведения такой инокуляции, потребуется предварительная стерилизация помещения, а также необходимо будет использовать резиновые перчатки и марлевую повязку на лицо. Стерилизацию помещения необходимо проводить в течении 30…60 минут с помощью специальной бактерицидной лампы. После стерилизации в помещение рекомендуется заходить спустя 10…15 минут. Входить в помещение необходимо с уже надетыми перчатками и повязкой. Протираем спиртом перчатки, инструменты и все рабочие поверхности: стол, банки, чашку Петри и т.д. Когда все готово к проведению инокуляции, берем скальпель, опускаем его в спирт и прокаливаем над пламенем горелки. Поскольку скальпель толще иглы, нет необходимости прокаливать его докрасна – достаточно просто подержать скальпель над пламенем горелки в течении 10…20 секунд. Затем так же, как и в случае с иглой, опускаем скальпель обратно в спирт. После этого снова подносим скальпель к горелке для того, чтобы находящийся на его поверхности спирт загорелся. И пока спирт горит, несем скальпель к чашке Петри, в которой находится мицелий псилоцибиновых грибов. За это время спирт на скальпеле должен как раз сгореть до конца; если этого не произошло, просто потрясите немножко скальпелем и пламя потухнет. Дальше, немного приоткрыв крышку чашки Петри, вырезаем скальпелем кусочек агара размером примерно один квадратный сантиметр, накалываем его на кончик скальпеля, и закрыв чашку Петри, несем к банке с зерном. Немного приоткрыв крышку банки, бросаем кусочек агара внутрь, на зерно, просто постучав скальпелем по краю банки. И сразу же закрываем крышку обратно. Чтобы крышка открылась легко, ее следует отвернуть заранее, а потом неплотно прикрыть. Совершенно не важно, упал ли кусочек агара мицелием вниз, на зерно, или наоборот. Не нужно пытаться его перевернуть, тряся банку. Так можно добиться того, что агар прилипнет к стенке банки, и отделить его будет намного труднее. Если инокуляция прошла успешно, через некоторое время, агар обрастет мицелием со всех сторон и мицелий гриба благополучно переберется на зерно. Все операции по инокуляции следует проводить быстро, действовать уверенно и не волноваться. Лучше заранее, потренироваться вырезать кусочки агара и научится стряхивать их в банку. Это можно сделать и на специально приготовленном для этих целей “пустом” агаре, и на ненужном зараженном агаре. Следует не слишком широко открывать крышки, и закрывать их надо сразу же, после проведения необходимых операций. Правильно держать руки и инструменты сбоку, а не над открытыми поверхностями субстрата и агара. Помните, что со всех предметов вниз падают бактерии, которые в дальнейшем могут вызвать заражение. Уход за банками с псилоцибиновыми грибами После инокуляции банки с зерном необходимо убрать в темное и теплое (25…30 градусов) место. Поскольку присутствие света даже в небольших количествах тормозит развитие мицелия, если у вас нет возможности убрать банки в темное место, их следует обернуть фольгой или каким-нибудь другим светонепроницаемым материалом. Через 2…4 дня после инокуляции, если инокуляция прошла успешно, кусочек агара начнет обрастать пухом мицелия, а в местах соприкосновения с зерном мицелий начнет перебираться на субстрат. Мицелий растет довольно быстро и с каждым днем осваивает все большую поверхность субстрата, перебираясь по зернам и образовывая полностью заросшие участки. Как только мицелий начал активно распространяться по субстрату и появились полностью обросшие участки из нескольких зерен, субстрат можно “перетряхнуть”. Во время перетряхивания обросший мицелием участок субстрата разбивается на отдельные зерна, которые, попадая в новые места, образуют сразу несколько новых очагов развития мицелия – это существенно сокращает время освоения мицелием субстрата, и способствует более равномерному его зарастанию. Но поскольку большая часть зерна еще не обросла мицелием и риск ее заражения еще слишком велик, перетряхивать субстрат следует очень аккуратно. При перетряхивании нужно следить за тем, чтобы зерно как можно меньше касалось крышки банки и самого тампона. В этих местах могут находиться посторонние микроорганизмы, пробравшиеся извне, которые могут привести к заражению субстрата. Следует не трясти банку с будущими грибами из стороны в сторону, а, удерживая ее в одной руке, другой рукой наносить легкие удары по нижней части банки. Таким образом субстрат будет перемешиваться внизу банки, почти не попадая в ее верхнюю часть. Сразу после перетряхивания субстрата зерна, обросшие мицелием, теряют свою пушистость и их практически невозможно отыскать в общей массе. Но уже через 1…2 дня на некоторых зернах становятся видны белые точки мицелия, которые быстро увеличиваются в размере и, перебираясь на соседние зерна, завоевывают новые территории. Через несколько дней мицелий грибов разрастается по субстрату и снова образовывает полностью заросшие участки. Когда это произошло, перетряхивание субстрата следует повторить. С каждым новым перетряхиванием субстрата, очагов развития мицелия становиться все больше, и зарастание происходит все быстрее. Для полного обрастания субстрата мицелием обычно требуется 3…5 недель, в зависимости от температуры окружающего воздуха. Чем меньше остается неосвоенного мицелием субстрата - тем меньше риск его заражения при перетряхивании. Но все равно перетряхивать субстрат следует как можно аккуратней, так как если заражение все-таки произойдет, субстрат придется выбросить, а банку придется заново стерилизовать. И будет очень обидно, если это случиться уже в самом конце колонизации субстрата. Если заражение субстрата все же произошло, субстрат из этой банки необходимо выбросить. Некоторые виды плесени содержат токсины и могут быть очень опасны для здоровья человека. Поэтому зараженный субстрат проще выкинуть и приготовить все заново. Нормальный цвет мицелия – белый, допускаются лишь белый цвет с легким голубоватым или желтоватым оттенком. Нормальный запах мицелия – грибной, но запаха практически не чувствуется, его можно почувствовать либо сразу после перетряхивания субстрата (уже на завершающей стадии, когда почти все зерно обросло мицелием), либо при перекладывании субстрата из банки в контейнер. Все другие цвета и запахи – признак заражения субстрата. После того, как субстрат будет полностью колонизирован мицелием, его можно пересыпать в контейнеры для стимуляции плодоношения. Приготовление покровного грунта для грибов Покровный грунт готовится из смеси торфа и вермикулита в соотношении 2 к 1 соответственно. Берем подходящую емкость и насыпаем в нее две части торфа, затем туда же насыпаем одну часть вермикулита, после чего все это перемешиваем до получения однородной массы. Теперь покровный грунт необходимо увлажнить. Для этого добавляем в нашу смесь воду. Обычно для достижения оптимальной влажности воды требуется примерно столько же, сколько вермикулита (одна часть), может быть, чуть больше. Тщательно перемешиваем до получения однородной массы. Влажность покровного грунта легко проверить, сжав его в кулаке. Если при этом между пальцами выступают капли воды – значит, влажность оптимальная, если капли не выступают – воды следует немножко добавить, если вода вытекает ручьями – в смесь следует добавить вермикулита, либо торфа (вермикулит лучше впитывает влагу). После того, как смесь приготовлена, покровный грунт необходимо стерилизовать. Для этого накладываем его в банку, закрываем банку крышкой (крышку можно закрывать плотно, поскольку покровный грунт довольно рыхлый, при избыточном давлении банка не взорвется), ставим ее в скороварку и стерилизуем в течение 30…60 минут. После стерилизации покровная смесь должна остыть до комнатной температуры. Использовать покровный грунт лучше спустя сутки после окончания стерилизации. Перемещение мицелия грибов в покровный грунт Теперь нам необходимо пересыпать обросший мицелием субстрат в пластиковый контейнер и «укрыть» его покровным грунтом. Все операции необходимо проводить в стерильных условиях, работая в резиновых перчатках и марлевой повязке. Все рабочие поверхности перед началом работы необходимо протереть спиртом. В нашем случае будет использоваться обыкновенный, пластиковый контейнер для пищевых продуктов емкостью 1.1 л. Протираем контейнер спиртом (изнутри и снаружи). Затем, предварительно протерев спиртом банку с субстратом, открываем крышку и высыпаем зерно обросшее мицелием в контейнер. Для того, чтобы крышка банки легко открылась, ее необходимо отвернуть заранее, а потом неплотно прикрыть и протереть спиртом. Для того, чтобы зерно легко высыпалось из банки, зерно необходимо предварительно «разбить» (то есть, проделать то же самое, что и при перетряхивании субстрата). Затем, разламывая крупные куски мицелия, более-менее выравниваем поверхность, после чего, предварительно протерев спиртом банку с покровным грунтом, «укрываем» субстрат, насыпая грунт слоем 2…3 см. Не прижимая грунт, более-менее выравниваем поверхность. Покровный грунт должен выглядеть “воздушным” и не образовывать крупных комков. Если комки все же присутствуют, их необходимо удалить либо просто измельчить. Мицелия гриба не должно быть видно на поверхности покровного слоя. Если это вдруг произошло, присыпьте это место грунтом. Теперь необходимо обернуть контейнер фольгой. Удобней всего проделывать это в следующей последовательности: расстилаем фольгу, ставим на нее контейнер; оборачиваем его фольгой сверху; затем отрезаем фольгу от рулона и загибаем ее с одной стороны; после этого поднимаем все края и загибаем их к верху. Теперь контейнер необходимо убрать в темное и теплое место сроком на одну неделю. Поскольку фольга не пропускает свет, контейнер достаточно поставить в помещение с температурой 25…30 градусов. Через неделю мицелий пробьется сквозь покровный грунт и контейнер можно будет выставлять в парник для начала плодоношения. Подготовка парника для выращивания грибов В нашем случае в качестве парника будет использоваться обычный террариум, который продается в любом зоомагазине. Почему террариум? Потому, что его конструкция не требует практически никаких доработок и вместе с тем отвечает всем предъявленным ей требованиям. Террариум очень удобно открывается, в него можно установить до шести контейнеров с галлюциногенными грибами (необходимо подобрать по размеру), у него прозрачный верх, отлично пропускающий дневной свет, а также имеется несколько технологических отверстий, которые можно использовать по своему усмотрению (например, для автоматизации системы вентиляции или увлажнения). Перед использованием террариум необходимо тщательно вымыть. Если вы не собираетесь использовать автоматическую систему вентиляции и увлажнения, то технологические отверстия лучше закрыть фольгой. На дно террариума насыпается мелкий керамзит, предварительно тщательно промытый, слоем 1…2 см, его необходимо разровнять. Затем в террариум необходимо налить воды так, чтобы слой керамзита оказался погруженным в воду примерно наполовину, то есть, чтобы уровень воды доходил примерно до середины керамзитового слоя. Таким образом остигается наиболее эффективная площадь поверхности для максимального испарения воды. В крышке террариума установлена съемная вентиляционная решетка, чтобы животные, находящиеся в террариуме, могли свободно дышать. Для создания парника ее необходимо обернуть двумя-тремя слоями пищевой пленки по всей поверхности. Пищевая пленка надежно удерживается на решетке на протяжении всего периода эксплуатации террариума, не позволяя влаге испаряться и прекрасно пропуская свет. Щели, которые остаются в местах крепления решетки к крышки террариума, закрывать не нужно, они создают дополнительную циркуляцию воздуха и обеспечивают необходимую вентиляцию парника. Увлажняют парник путем разбрызгивания воды из обыкновенного хозяйственного распылителя на крышку террариума. Такое увлажнение необходимо проводить два раза в день, утром и вечером. Дополнительно подливать воду в террариум нет необходимости. Избыток влаги, скатываясь с крышки террариума, собирается внизу и вновь испаряется благодаря увеличенной за счет керамзита поверхности. Если изготовить бокс для выращивания псилоцибиновых грибов для вас затруднительно, то можно купить автоматический гроубокс, позволяющий с минимальным участием человека поддерживать идеальные условия для жизнедеятельности психоактивных грибов. Стимуляция урожайности при выращивании гриба Спустя неделю после покрытия (неделя – это оптимальный срок, подобранный опытным путем) достаем наш контейнер и снимаем фольгу. Проще не разматывать фольгу, а вырезать верх ножом или скальпелем, процедура напоминает открывание сметаны. К этому времени мицелий должен местами показаться на поверхности покровного слоя. Если мицелия на поверхности слишком много, это значит, что либо контейнер стоял дольше недели, либо толщина покровного слоя была меньше 2…3 см. Еще раз хочется напомнить, что и толщина покровного слоя, и время, отведенное на фазу активного роста мицелия в покровном слое, были подобраны опытным путем в течение довольно длительного времени и являются оптимальными. Мицелий должен только-только начать пробиваться сквозь покровный слой. Затем устанавливаем наши контейнеры в террариум, и, предварительно увлажнив, закрываем крышку. Теперь, террариум необходимо установить в таком месте, где будет присутствовать дневной свет, но где на него не будут попадать прямые солнечные лучи. Наиболее подходящим, является место не вдалеке от окна. Через несколько дней мицелий пробивается практически по всей поверхности покровного соля. Затем рост мицелия как бы замедляется, и на его поверхности начинают появляться круглые уплотнения – примордии. Буквально на следующий день в этих уплотнениях уже можно различить шляпку и ножку будущего галлюциногенного гриба. Террариум следует продолжать проветривать и увлажнять дважды в день, утром и вечером. Если температура и влажность в парнике оптимальные, то псилоцибиновые грибы развиваются довольно быстро, и уже за 2…3 дня вырастают до размера 5…10 см (зависит от вида грибов). Оптимальное время сбора психоактивных грибов Собирать психотропные грибы следует в тот момент, когда вуаль, прикрывающая спороносный слой, у большинства грибов начинает рваться. После этого момента грибы визуально все еще продолжают расти, но роста грибной массы уже не происходит. Одновременно с разрывом вуали снижается и количество психоактивных веществ, псилоцибина и псилоцина, содержащихся в теле гриба, поэтому грибы необходимо собирать тут же, после разрыва вуали гриба.